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纳米化诱癌剂诱发小鼠肝癌的机制研究

  • 作者:本站
  • 时间:2019-07-12
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简介 摘要第9-12页ABSTRACT第12-15页第一章绪论第16-22页肝癌严重威胁人们的生命与健康第16页肝癌的病理机制研究现状第16-18页用于肝癌研究的动物模型的研究进展第18-20页肝癌

纳米化诱癌剂诱发小鼠肝癌的机制研究

摘要第9-12页ABSTRACT第12-15页第一章绪论第16-22页肝癌严重威胁人们的生命与健康第16页肝癌的病理机制研究现状第16-18页用于肝癌研究的动物模型的研究进展第18-20页肝癌模式动物种类研究进展第18-19页肝癌造模技术研究进展第19页肝癌造模诱癌剂研究进展第19-20页肝癌造模技术的需求与展望第20页本课题研究思路第20-22页第二章纳米化诱癌剂诱发小鼠肝癌作用机制研究第22-56页材料与仪器第23-28页实验试剂第23-25页主要仪器第25-26页主要溶剂的配制第26-28页实验方法第28-37页采用高压均质法制备纳米化诱癌剂第28页采用激光粒度仪测定粒径、zeta电位和稳定性第28页采用场发射扫描电镜(FE-SEM)观察微观形貌第28-29页采用透析袋法检测体外释放第29-30页的标准曲线测定第29页纳米化诱癌剂的体外释放测定第29-30页实验动物饲养和小鼠肝癌模型的构建第30页实验动物饲养第30页小鼠肝癌模型构建第30页动物组织样本回收第30-31页肝肾组织固定、脱水、包埋及石蜡切片制作第31页纳米化诱癌剂等致癌效果的评价第31-33页血液中生化指标检测第31页肝肾组织苏木精&伊红(H&E)染色及评分第31-32页肝组织Masson染色及评分第32-33页纳米化诱癌剂致癌的体内分子机制研究第33-35页利用免疫组织化学法检测COX-2、PCNA、β-catenin的表达水平并定量第33页采用Tunel法检测细胞凋亡并定量第33-35页纳米化诱癌剂致癌机制的体外研究第35-36页细胞培养第35页通过MTT法检测纳米诱化癌剂等对肝细胞的毒性作用第35页通过荧光强度检测肝细胞对nanoRhodB的内吞作用第35-36页纳米化诱癌剂体内分布的模拟检测第36页数据统计第36-37页实验结果第37-53页纳米化诱癌剂粒径及电位稳定第37-38页纳米化诱癌剂的体外释放持续稳定第38-39页纳米化诱癌剂低频、微量暴露成功诱发小鼠肝癌第39-45页纳米化诱癌剂影响小鼠生命体征第39-40页纳米化诱癌剂对小鼠肝脏损伤严重第40页纳米化诱癌剂诱使小鼠肝脏产生肿瘤第40-41页纳米化诱癌剂严重破坏小鼠肝脏组织结构第41-43页纳米化诱癌剂诱癌效果优于DEN第43-45页纳米化诱癌剂诱导肝癌的分子机制第45-50页纳米化诱癌剂上调了肝脏β-catenin入核量第45-46页纳米化诱癌剂使肝脏炎症相关因子COX-2表达量增加第46-47页纳米化诱癌剂增加了肝脏中细胞增殖因子PCNA的表达第47-48页纳米化诱癌剂使肝脏中Kupffer细胞凋亡显著增加第48-50页体外细胞实验中纳米化诱癌剂对正常肝细胞杀伤作用更强第50-52页纳米化诱癌剂对正常肝细胞生存抑制作用更强第50-51页正常肝细胞对nanoRhodB的胞吞作用更强第51-52页纳米化诱癌剂具有肝靶向作用第52-53页讨论第53-56页结论第56-57页本文的创新之处第57页今后研究的计划第57-58页参考文献第58-66页致谢第66-68页附录:攻读学位期间学术成果第68页。

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